Ўзбекистон республикаси фанлар академияси

 
Адабиётлар: 
1.
Prasada Rao T., Kala R., Danipl S.// anal. Chim. Asta; 2006, pp. 578 105-108. 
2.
Zhang Z., Seitz W.R., A sarbon dioxide sensor based on fluoressense.// anal. Chim. Asta; 
1984,160, pp. 205-208. 
3.
А.М. Насимов, Х.Ш.Ташпулатов, Ш.Мирзаев, Д.Т.Ташпулатов. Zol-gel технологияси 
асосида «смарт» наногибрид материаллар тайёрлаш. СамДУ илмий ахборотномаси, 2017, 
3, 72-76 бб. 
4.
А.О. Буронов, А.М.Насимов, Д.Т.Ташпулатов, Х.Ш.Ташпулатов. Zol-gel технологияси 
асосида эритма муҳитида аммиакни аниқловчи оптик сенсор тайёрлаш ва хоссаларни ў 
рганиш. СамДУ илмий ахборотномаси, 2018, 5, 147-151 бб. 
 
ПОЛУЧЕНИЕ ИНОКУЛЯТА ДЛЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ DUNALIELLA SALINA 
А.Э.Исмаилов, Д.Т. Мирзарахметова 
Ташкентский государственный технический университет.
[e-mail] 
В последние годы интерес к промышленному культивированию неко-торых 
микроводорослей (хлорелла, спирулина, дуналиелла, порфиридиум, гематококкус) постоянно 
возрастает. Это связано со способностью микрово-дорослей быстро размножаться (например, 
при благоприятных условиях биомасса микроводорослей может удваиваться каждые 5 часов) и 
тем, что эти микроводоросли являются богатым источником для промышленного получения 
некоторых ценных биологически активных веществ (аминокислот, витаминов, пищевых 
красителей, комплексов с микроэлемен-тами и т.д.). Несмотря на это, вопрос продуктивности 
биомассы остается актуальным.
Продуктивность дуналиеллы зависит от следующих факторов: конструк-ции 
фотобиореактора, питательной среды, концентрации углекислого газа, рН, температуры, 
освещенности [Meshcheryakova et al, 2012]. Оптимальное сочетание все этих параметров 
позволит получить максимальный выход биомассы. Имеется достаточно много литературы по 
её культивированию, получению из неё биологически активных веществ и изучению их свойств 
[Gonzalez et al, 2009]. При лабора-торном и промышленном культивировании дуналиеллы 
применяются два режима культивирования: культивирование в условиях активного фотосин-
теза для накопления зелёной биомассы и культивирование для накопления в микроводорослях 
биологически активных веществ. Целью настоящей работы явилось исследование увеличение 
количества клеток при культивировании Dunaliella salina в биореакторе с горизонтальными 
пластинами для получения зелёной биомассы. 
Объектом исследования были микроводоросли, выделенные из озера Арал. Для 
культивирования микроводоросли использовали следующую среду: NaCl - 116 г/л, 
М2SO4∙7Н2О - 50 г/л, КNO3 -2,5 г/л, К2НРO4 - 0,2 г/л и 1 мл раствора микроэлементов [Магай 
et al, 2019]. Культивирование проводили в стеклянном сосуде вместимостью 1 л высотой 16,5 
см и диаметром 9,9 см, содержащей 750 мл питательной среды (высота 9 см), освещённость 
1000 лк, с барботированием воздуха, периодичность света и темноты: 16 часов света и 8 часов 
темноты. Температура среды поддержи-валась 14-20°С. Способ культивирования заключался в 
следующем: при выходе инокулята на стационарный уровень и достижении на 5 сутки при 
количестве клеток 1,25 млн/мл. Соотношение инокулята и питательной среды составило 1:6. 
Предварительная оценка прироста клеток осуществляли методом прямо-го подсчета 
клеток в камере Горяева. Определение биомассы микроводорос-лей осуществляли отделением 
биомассы от культуральной жидкости центри-фугированием при 4500 об/мин в течении 30 
минут и дальнейшим высушиваем и определением сухой биомассы. 
При выращивании культуры в режиме периодического освещения выход на 
стационарную фазу роста с максимальной плотностью культуры происходил на 5 сутки. На 6 
сутки происходило уменьшение плотности культуры за счёт агрегации клеток и выпадения их в 
осадок. Анализ осадка под микроскопом показал, что в нём проходит процесс размножения 

---

20 
микроводорослей. Этот осадок собирали и оставляли стоять при умеренном освещении 1000 лк. 
Через неделю из осадка начинали появляться мелкие зелёные микроводоросли. При внесении 
их в биореактор в качестве инокулята, титр культуры увеличивался.
Нами был сконструирован пленочный аппарат, способный на интенсив-ное накопление 
биомассы микроводорослей Dunaliella salina, Конструкция которого предусматривала наличие 
прозрачных горизонтальных пластин. Высокая удельная производительность установки 
достигается благодаря использованию поверхности пластин при одновременном воздействии 
на пленку культуральной жидкости световой энергии и углекислого газа. Нали-чие регулятора 
давления газовоздушной смеси в секции ввода суспензии способствует рациональному расходу 
CO2 в аппарате. Для увеличения поверхности для выпадающих в осадок клеток были 
помещены в биореактор 9 прозрачных полиуретановых пластинок радиусом 9 см и отступом 1 
см. Полученные результаты показали, что при выращивании микроводорослей с 
использованием 9 пластин титр клеток в объеме среды (750 мл) культивирования увеличился в 
2 раза.
Таким образом, в полученные научные данные могут служить для совершенствования 
технологии пролученния инокулята для культивирования микроводорослей в закрытой системе 
с учетом увеличения поверхности контакта в пленочном биореакторе.