Universum: химия и биология

Таблица 3. 
Влияние состава лизирующий смеси на образование протопластов гриба
Trichoderma harzianum (температура 28
0
С) 
Состав лизирующий смеси, мг/мл 
Количество протопластов в 1 мл х 10
4 
24-х час.мицелий 
48-час.мицелий 
Длительность лизиса, час 
12 
24 
12 
24 
ПСУ 
Начало лизиса 
4 
3 
4 
Целлолигнорин 
5 
8 
4 
5 
Целлоафганин 
6 
10 
4 
7 
Целлолигнорин+целлоафганин 
12 
14 
9 
11 
ПСУ+целлолигнорин 
6 
9 
5 
6 
ПСУ+целлоафганин 
7 
10 
6 
7 
ПСУ+целлолигнорин+целлоафганин 
14 
16 
10 
9 
После 12-ти часового лизиса 24-х часового мице-
лия отмечено наибольшее образование протопластов 
в тех вариантах, в состав которых входил целлолиг-
норин, целлоафганин+ПСУ. При лизисе 48-ми часо-
вого мицелия гриба протопласты были обнаружены в 
меньшем количестве. Более медленное образование 
протопластов в этом случае, вероятно, связано с воз-
растными изменениями в клеточной стенки гриба. 
Таким образом, описанным методом нам удалось 
получить протопласты у ряда микроскопических гри-
бов рода Trichoderma. 
Установлено, что оптимальными стабилизато-
рами при образовании протопластов у испытанных 
культур являются сорбит и маннит. 
Наиболее активной лизирующий системой, поз-
воляющей получать стабильные протопласты явля-
ется система, состоящая из ПСУ, целлолигнорина и 
целлоафганина. 
 

---

№ 2 (68)
февраль, 2020 г.
20 
Список литературы: 
1. Foury F. , Goffen A. Combination of 2-deoxy-D-glucose and snailgut enzyme treatments for preparing spheroplaste 
of Sohizo saccharomyces pombe. // J. Gen. Microbiol. 1973. V.75. N 1. P.227-229 
2. Стенько А.С., Бескоровайная Н.К. Получение и регенерация протопластов Streptomyces griscus. // Микро-
биол. ж. I983. T.45. Н 2. С. 29-33 
3. Nayak K.K., Padbidri A.Y., Hirlekar M.G., Pandley N.K. A rapid method for preparation of Rhodotorula glutinis. // 
Curr. Sci. India. -1986. V.55. N 18. P.926-927 
4. Багдасарян С.Н. , Авакян З.Т Ополучении протопластов энтомопатогенных бактерий Вас. popiliae и Вас. thu-
ringiensis // Биол. Армении. Ереван. 1985. № 3. рук. Деп. в ВИНИТИ, 14 авг. № 6017-85 (Деп).
5. Deshpande M.V. , Balkrishnan H. , Ranjukar P.K , Shankar V. Isolation and immobilization of Sclerotium rolefsii 
protoplasts. // Biotechnol. Lett. 1987. V. 9. N.1. P.49-52 
6. Longley R.R., Rose A.H. , Kniths B.S. Composition of the protoplast membrane from Saccharomyces cerevisiae. // 
Biochem. J. 1968. V. 108. N. 3. P. 401-412 
7. Кожина Т.Н., Мироненка Н.В. и Чепурная О.В. Получения и регенерация проторластов у дрожжеподобных 
грибов. // Микол. и фитопатол. I983.Т.17. Вып. 3. С. 248-251 
8. Стрижкова А.М., Осничук Л.Ф., Мацелюх Б.П., Кравец О.М., Богацкий М.А., Евсеева Р.А. Селекция 
Вас.polymixa методом протопластирования. //Персп. создания лекарств. средств с использ. биотехн. Тезисы 
докл. Всесоюзн. конф. Москва 20-21 ноября. М. I985. С-30 
9. Okanischi M., Suzuki., Umesave M. Formation and reversion of Streptomycete protoplasts culture condition and 
morghological study.//J.Gen.Microbiol., 1974.V.80.N.2.P.389-400 
10. Sugoracha G., Fucni K., ota F.et al. Rapid formation of protoplast of S.griseoflavus and their fine structure. //Jap.J.Mi-
crobiol. 1971. V. 15.N.1. P. 73-84.
11. Кожина Т.Н., Чепурная О.В. Слияние протопластов как метод получения гибридов у дрожжей – сахаромице-
тов.//Генетика, I980. Т.16. №2. С.360-363
 

---

№ 2 (68)
февраль, 2020 г.
__________________________ 
Библиографическое описание: Исследование рН-функции углеграфитовых электродов, модифицированных хин-
гидроном // Universum: Химия и биология : электрон. научн. журн. Аронбаев С.Д. [и др.]. 2020. № 2(68).
URL: http://7universum.com/ru/nature/archive/item/8650